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  5. Trichlorure d'azote et autres composés chlorés M-104 (rubrique sélectionnée)

MétroPol Trichlorure d'azote et autres composés chlorés M-104

Sommaire de la fiche

Cette méthode décrit le prélèvement Actif sur cartouche de silice imprégnée ; cassette avec filtres imprégnés et l'analyse par potentiométrie ; chromatographie ionique avec suppression détection conductimétrique de la (des) substance(s) : Trichlorure d'azote et autres composés chlorés

Données de validation : Validation complète

Substances

Informations générales

Propriétés physico-chimiques
Nom N° CAS Formule chimique Classification CMR
Trichlorure d'azote 10025-85-1 NCl3
Plus d'informations
Nom Masse molaire Densité Synonymes Fiche toxicologique
Trichlorure d'azote 120,36

Familles de substances

  • CHLORAMINES

Principe et informations

Cette méthode permet la détermination de façon indépendante du trichlorure d’azote, du chlore et autres dérivés chlorés (résultats exprimés en équivalent chlore Cl2).

Cette méthode permet de doser les dérivés du chlore (acide hypochloreux, hypochlorite, chloramines…) présents dans l’atmosphère des halls de piscine par exemple ou de tout autre lieu utilisant des composés chlorés pour la désinfection des eaux (agro-alimentaire…). La formation respective des différentes chloramines dépend du pH et du rapport chlore/azote.

Le gel de silice retient les composés chlorés (chlore, acide hypochloreux, monochloramine et dichloramine) avec une efficacité supérieure à 95 %. La réaction est une réaction du type :

Exemple de l’acide hypochloreux

NH2SO3H + HOCl → ClNHSO3H + H2O

 

Les filtres imprégnés collectent la fraction de chloramines la plus volatile (trichlorure d’azote NCl3) avec une efficacité proche des 100 %. Le principe est basé sur la décomposition à pH élevé, grâce au carbonate de sodium, du NCl3 en ammoniac et hypochlorite. L’hypochlorite formé est ensuite réduit en chlorures par le trioxyde de diarsenic, selon les réactions :

2 NCl3 + 6 H2O → 2 NH3 + 6 HOCl

3 As2O3 + 6 HOCl → 3 As2O5 + 6 HCl

Pour les prélèvements dans les atmosphères de halls de piscines par exemple où le trichlorure d’azote peut représenter 95% des espèces chlorées présentes, une cassette seule peut-être utilisée.

L’utilisation d’une cassette seule permet également la détermination de tous les composés chlorés sans distinction.

Pour déterminer la teneur en chloramines et dérivés chlorés sans distinction, les prélèvements sont effectués uniquement avec une cassette contenant un filtre membrane de porosité < 1 µm en PVC ou PFTE par exemple (pour la pollution particulaire) et les deux filtres imprégnés (pour la pollution gazeuse).

Le trioxyde de diarsenic est un composé très toxique par ingestion, inhalation et contact cutané. Toutes précautions devront être prises lors de sa manipulation et son élimination pour limiter l’exposition au plus bas niveau possible.

 

Principe de prélèvement et d'analyse

  • État physique

    Aérosols (mélange de gaz ou vapeurs / particules)
  • Type de prélèvements

    Actif
  • Nom du dispositif

    cartouche de silice imprégnée ; cassette avec filtres imprégnés
  • Plus d'informations

  • Technique analytique

    POTENTIOMETRIE;CHROMATOGRAPHIE IONIQUE AVEC MEMBRANE DE SUPPRESSION
  • Injecteur

    PASSEUR AUTOMATIQUE
  • Détecteur

    ELECTRODE SPECIFIQUE;CONDUCTIMETRIE

Domaine d'application

Substance Quantité minimum sur le dispositif Quantité maximum sur le dispositif Concentration minimum Concentration maximum Volume maximum
Trichlorure d'azote

13 µg

450 µg

0,03 mg/m3

1,05 mg/m3

480 L

Réactifs

  • ACETATE DE SODIUM
  • ACIDE ACETIQUE
  • ACIDE SULFAMIQUE
  • CARBONATE DE SODIUM
  • EAU
  • GLYCEROL
  • IODATE DE POTASSIUM
  • IODURE DE POTASSIUM
  • SOLUTION ETALON 1g/L
  • TRIOXYDE DE DIARSENIC

Consignes de sécurité pour les manipulations en laboratoire

Méthode de prélèvement

Deux dispositifs de prélèvement (en série) :

Dispositif N°1
  • Type dispositif

    CARTOUCHE
  • Support ou substrat de collecte

    • GEL DE SILICE IMPREGNE
  • Quantité de support dans la plage de mesure (mg)

    1000
  • Quantité de support dans la plage de garde (mg)

    500
  • Préparation du substrat

    100 à 200 g de gel de silice sont lavés à l'eau ultra-pure et séchés à 60°C. Ensuite il est mélangé à 200 mL de solution acide sulfamique à 25 g/L et séché à 60°C.

  • Perte de charge du dispositif au débit de prélèvement

    2,5 kPa
  • Commentaires, conseils et consignes

    Les deux plages sont séparées par un fritté 20 µm.

     

     

Dispositif N°2
  • Type dispositif

    CASSETTE 37 mm 3 pièces
  • Support ou substrat de collecte

    • 2 FILTRES EN FIBRE DE QUARTZ IMPREGNES
  • Préparation du substrat

    Solution d'imprégnation : 0,8 g de trioxyde de diarsenic, 8 g de carbonate de sodium, 4mL de glycérol pour 100 mL d'eau.

    Les filtres sont imprégnés avec 500 µL de solution d'imprégnation.

    Le séchage est réalisé sous sorbonne pendant 24 h dans un local exempt de toute pollution. Les cassettes sont ensuite fermées et conservées dans ce local jusqu’à leur utilisation.

  • Perte de charge du dispositif au débit de prélèvement

    0,75 kPa
  • Commentaires, conseils et consignes

    Un filtre est déposé au fond de la cassette et le second sur la pièce intermédiaire.

     

    Rappel :

    La cassette seule peut-être utilisée dans les piscines par exemple où le trichlorure d'azote peut représenter 95% des espèces chlorés. Pour déterminer la teneur en chloramines et dérivés chlorés sans distinction, les prélèvements sont effectués uniquement avec une cassette contenant un filtre membrane de porosité < 1 µm en PVC ou PFTE par exemple (pour la pollution particulaire) et les deux filtres imprégnés (pour la pollution gazeuse). La désorption et l'analyse du filtre membrane seront réalisées séparément des filtres imprégnés et uniquement si l'on souhaite doser les composés chlorés sous forme de sels (ce filtre membrane ne retient pas le trichlorure d'azote gazeux), mais ces résultats ne doivent pas être ajoutés aux résultats obtenus pour les filtres imprégnés qui captent les composés gazeux.

     

Schéma du dispositif en série

Perte de charge du dispositif en série : 3,16 kPa

Conditions de prélèvement

  • Débit de prélèvement (L/min)

    1
  • 15 minutes (VLEP-CT possible dans ces conditions)

    oui
  • Temps de prélèvement maximum en heures

    8

Pompe de prélèvement

  • Pompe à débit de 0,1 à 3,5 L/min

Conditionnement particulier

  • Choix conditionnement particulier

    Désorption immédiate
  • Description

    Les tubes devront être désorbés le jour du prélèvement. Après les prélèvements, les plages de gel de silice sont désorbées séparément dans 10 mL de solution d’acide sulfamique à 1 g/L.

    Si les prélèvements sont effectués dans des piscines, éviter l’utilisation de récipients en verre.

     

Compléments

  • Contrôler régulièrement la pompe pour éviter les problèmes de perte de charge.


Préparation des dispositifs de prélèvement en vue d’une intervention en entreprise

Méthode d'analyse

Principe général de l'analyse en laboratoire

Préparation d'analyse

  • Conditions de conservation avant analyse

    • Avant prélèvement :

    La durée de conservation des filtres vierges imprégnés est fixée à 6 mois. L'absence d'interférent peut être vérifiée en traitant quelques filtres selon la méthode d'analyse habituellement utilisée au laboratoire.

    Les tubes de gel de silice imprégné peuvent être conservés également 6 mois (sous réserve de vérification du potentiel oxydant du gel en réalisant une mesure du gel de silice dans l'acide sulfamique par potentiomètrie (pollution possible lors du stockage)).

    • Après prélèvement :

    Les tubes devront être désorbés le jour du prélèvement et analysés dans les 10 jours.

    Les cassettes pourront être conservées 30 jours sans perte de polluant.

  • Séparation des dispositifs

    oui
  • Séparation des plages

    oui
  • Nombre d'étapes de préparation

    2
  • Commentaires sur les étapes

    La première étape décrit le traitement des tubes. Les solutions seront dosées par potentiométrie.

    La deuxième étape décrit le traitement des cassettes. Les solutions d'extraction seront dosées par chromatographie ionique.

  • Conditions de conservation échantillon préparé avant analyse

    Les solutions de désorption des cassettes se conservent à température ambiante pendant 30 jours.

2 étapes de préparation :
Étape de préparation N°1
  • Séparation des plages

    oui
  • Solvant ou solution

    • ACIDE SULFAMIQUE
  • Type de préparation

    Désorption
  • Volume

    10 mL
  • Autres conditions de préparation

    • Après prélèvement, les plages de gel de silice sont désorbées séparément dans 10 mL de solution d’acide sulfamique à 1 g/L.
    • Ajouter 0,1 mL de solution d’iodure de potassium (KI) 0,5 M.
    • Laisser agir pendant environ 2 minutes.
    • Ajouter ensuite 1 mL de solution tampon pH = 4,5 (acétate de sodium 1,8 M, acide acétique 6,4 M).
    • Les solutions obtenues sont ensuite dosées par potentiométrie.
    • Effectuer les mesures potentiométriques dans les 30 minutes suivant l’ajout du tampon.
  • Commentaires

    Remarque
    Traiter les blancs de laboratoire et blancs de terrain de la même façon.

Étape de préparation N°2
  • Séparation des plages

    oui
  • Solvant ou solution

    • EAU
    • ELUANT
  • Type de préparation

    Désorption
  • Volume

    10 mL
  • Ultrasons

    • Temps d'ultrasons : 10 min
  • Autres conditions de préparation

    • Ouvrir la cassette en veillant à ne pas perdre de particules éventuellement déposées sur parois qui précèdent le préfiltre et à ne pas polluer les filtres imprégnés
    • Déposer séparément chaque filtre utilisé pour le prélèvement, les blancs de laboratoire et de terrain sur le fond de béchers ou de flacons.
    • Introduire 5 à 20 mL de solution adaptée (eau ou éluant) sur chaque filtre.
    • Soumettre les flacons aux ultrasons pendant 5 à 10 minutes (ou agitation mécanique pendant 30 minutes).

    Remarque : Traiter les blancs de laboratoire et les blancs de terrain de la même façon.

     

Description

Analyse de la fraction particulaire uniquement si utilisation de la cassette seule et pour le dosage des composés chlorés sous forme de sels.

Deux conditions analytiques :

Condition analytique N°1

Les conditions analytiques utilisées lors du développement de la méthode sont fournies avec les données de validation 2.

  • Technique analytique

    • POTENTIOMETRIE
  • Détecteur

    • ELECTRODE SPECIFIQUE
  • Commentaires, conseils ou condition particulières

    Analyse par potentiométrie

    Les réactions mises en jeu en milieu acide et en présence d'iodure de potassium sont les suivantes :

    IO3- + 5 I- + 3 H2O → 3 I2 + 6 OH- (1) pour les étalons
    Cl2 + 2 I- → 2 Cl- + I2 (2) pour les tubes désorbés

     

    (1) : n moles de IO3- + 5n moles de I- (provenant du KI) libèrent 3n moles de I2.

    (2) : l'iodure réagit complètement avec le chlore pour former de l'iode, n moles de Cl2 donnent
    n moles de I2.

    La méthode consiste à mesurer l'iode libéré par potentiométrie à l'électrode spécifique chlore résiduel.

    D’après (1) et (2), n moles Cl2 (présentes dans les solutions désorbées) équivalent à (n/3) moles IO3- (étalons), comme :

    masse molaire M(Cl2)   = 71 g/mol,

    masse molaire M(KIO3) = 214 g/mol,

    Une quantité m (exprimée en mg/L) de KIO3 donne la même réponse potentiométrique que la même quantité m (en mg/L) de Cl2. L’étalonnage effectué à l’aide de KIO3 permet donc d’établir une courbe d’étalonnage directement exprimée en Cl2.

     

Condition analytique N°2
Les conditions analytiques utilisées lors du développement de la méthode sont fournies avec les données de validation.
  • Technique analytique

    • CHROMATOGRAPHIE IONIQUE AVEC MEMBRANE DE SUPPRESSION
  • Injecteur

    • PASSEUR AUTOMATIQUE
  • Colonne

    • COLONNE A SUPPRESSION
    • ECHANGEUSE D'IONS
  • Détecteur

    • CONDUCTIMETRIE
  • Commentaires, conseils ou condition particulières

    Autres méthodes utilisables pour le dosage des solutions de désorption des filtres

    Chromatographie ionique sans suppression, détection conductimétrique ou électrophorèse capillaire (Voir les méthodes d'analyse des Anions minéraux).

Étalonnage et expression des résultats

La méthode d'étalonnage indiquée est celle utilisée lors du développement. Elle n'a cependant pas de caractère obligatoire

  • Principe d'étalonnage

    externe
  • Solvant de l’étalon

    • Même solvant que celui des échantillons
  • Commentaires

    Tubes de gel de silice par potentiométrie :

    L’étalonnage effectué à l’aide de KIO3 permet d’établir une courbe d’étalonnage directement exprimée en Cl2.

    • Préparer une solution-mère à 1 g/L de KIO3 dans l’acide sulfamique (soit 0,1 g de KIO3 dans 100 mL d’acide sulfamique à 1 g/L). Les solutions étalon de KIO3 doivent être préparées le jour de l'analyse.
    • Préparer une solution à 100 mg/L de KIO3 par dilution de cette solution-mère au 1/10 (10 mL/100 mL d’eau).
    • Préparer une gamme d’étalonnage (par exemple de 1 à 20 mg/L en KIO3) par dilutions de la solution à 100 mg/L (par exemple 0,1- 0,5- 1- 1,5 et 2 mL dans 10 mL d’acide sulfamique (1 g/L)).
    • Ajouter dans chacun des étalons une mesure de gel  de silice imprégné puis 0,1 mL de KI (0,5 M), agiter et, 2 minutes plus tard, 1 mL de solution tampon pH 4,5.
    • Effectuer les mesures potentiométriques dans les 30 minutes suivant l’ajout du tampon.

     

    Filtres imprégnés par chromatographie :

    Les réactions d’oxydo-réduction mises en jeu en milieu alcalin sur les filtres imprégnés (décrite dans le principe) montre que la méthode consiste en final à doser les chlorures.

    Une gamme d’étalons est préparée, dans la même matrice, par dilution dans de l’eau, de la solution étalon de chlorure à 1 g/L.

     

  • Calcul de la quantité de substance sur le dispositif

    Cas des tubes de gel de silice : potentiométrie

    • La concentration C exprimée en équivalent-chlore sera :

    -  soit calculée à partir de la formule donnée sur le manuel d'instructions fourni avec les électrodes utilisées,

    -  soit déterminée sur une courbe d'étalonnage E = f (log C) établie à l'aide des solutions étalon.

    • La concentration, dans l'atmosphère, en composés dérivés du chlore (autres que NCl3) est donnée par :

    avec :

    CCl2 (mg/L) : concentration de l'échantillon en équivalent-chlore
    Cb (mg/L) : concentration moyenne des blancs de laboratoire en équivalent-chlore
    V (L) : volume d'air prélevé
    v (mL)  : volume de reprise des échantillons

     

    Cas des filtres : analyse chromatographique

    • La concentration des échantillons est déterminée sur la courbe d’étalonnage.
    • La concentration du polluant dans l’atmosphère, exprimé en NCl3, est donnée par :

    avec : 

    CCl- (mg/L) : concentration de l’ion dans l’échantillon
    Cb (mg/L) : concentration moyenne dans les blancs de laboratoire
    v (mL)  : volume de reprise des échantillons
    PMP (g/mol) : masse moléculaire du polluant, ici trichlorure d’azote (120,5 g/mol)
    PMI (g/mol) : masse moléculaire de l’ion, ici Cl- (35,5 g/mol)
    V (L) : volume d’air prélevé
    1/3 : rapport entre le nombre de moles Cl- dosées et le nombre de moles NCl3 effectivement présentes sur les filtres

    La concentration de l'ion dans l'échantillon correspond à la somme des concentrations des 2 filtres.

     

Bibliographie

[1] Chlorine in Workplace Atmospheres. Method ID-101, in OSHA Analytical Methods Manual, 1981, 23 p.

[2] BARBEE S.J., THACKARA J.W. and RINEHART W.E. - Acute inhalation toxicology of nitrogen trichloride. Am. Ind. Hyg. Ass. J. 44, 1983, pp. 145-146.

[3] GAGNAIRE F., AZIM S., BONNET P.,HECHT G. and HERY M. - Comparison of the sensory irritation response in mice to chlorine and nitrogen trichlorideJ. Appl. Toxicol. 14, 1994, pp. 405-409.

[4] HAILIN G.E., WALLACE G.G., and O’HALLORAN R.A.J. - Determination of trace amounts of chloramines by liquid chromatographic separation and amperometric detection. Analyt. Chim. Acta. 237, 1990, pp. 149-153.

[5] HERY M., HECHT G., GERBER J.M., GENDRE J.C., HUBERT G., REBUFFAUD J. - Exposure to chloramines in the atmosphere of indoor swimming pools. Ann. Occup. Hyg. 39, 1995, pp. 427-439.

[6] Henry’s lAw constants for flashoff. HOLZWARTH G., BALMER R.G. and SONY L. - The fate of chlorine and chloramines in cooling towers. Water Res. 18, 1984, pp.1421-1427.

[7] MASSIN N., BOHADANA A., WILD P., HERY M., TOAMAIN J.P. and HUBERT G. - Respiratory symptoms and bronchial responsiveness in lifeguards exposed to nitrogen trichloride in indoor swimming pools. Occupational and Environmental Medicine, 55, 1998, pp. 258-263.

[8] SANDERSON W.T., WEBER A. and ECHT A.  - Case reports : epidemic eye and upper respiratory irritation in poultry processing plants. Appl. Occup. Environ. Hyg. 10, 1995, pp. 43-49.

[9] HERY M., HECHT G., GERBER J.M. et coll.  - Exposition aux chloramines dans les atmosphères des halls de piscine. Cahiers de notes documentaires, 1994, 156, ND 1963, pp. 285-292.

[10] HERY M., GERBER J.M., HECHT G., SUBRA I.,POSSOZ C., AUBERT S., DIEUDONNE M., ANDRE J.C. - Exposure to chloramines in a green salad processing plant. Annals of Occupational Hygiene, vol. 42, 1998, n° 7, pp. 437-45I.

[11] GERARDIN F.,SUBRA I. - Mise au point d'une méthode de prélèvement et d'analyse du trichlorure d'azote en phase gazeuse. Cahiers de notes documentaires, 2004, 194, ND 2205-194-04, pp 39-50.

Historique

Version

Date

Modification(s) faisant l’objet
de la nouvelle version

Paragraphes
concernés

007

Jusqu’au
25/01/2006

Création + mises à jour

 

007/V01

 

25/01/2006

 

Nouvelle présentation

La procédure décrite ne comprend plus un mouillage des filtres par du glycérol

Désorption dans 5 à 20 mL d’eau

Ajout d’un historique en fin de fiche



Réactifs

Préparation des dispositifs de prélèvement

Désorption des filtres imprégnés

007/V01.01

17/10/ 2007

Référence bibliographique [3]

Montage simplifié pour les prélèvements en hall de piscine.

Conditions d’analyse (réactions mises en jeu)

Référence bibliographique [9]

Substances mesurables

Principe

Analyse des filtres imprégnés

Annexe 2

007/V01.02

2013

Principe de prélèvement (équations chimiques)

Modification des schémas

Révision de la terminologie

Principe

Annexe 1

Toute la fiche

M-104/V01

Novembre 2015

Mise en ligne

Prélèvement sur cassette + tube

Analyse par potentiométrie + chromatographie ionique ou électrophorèse capillaire

 

M-104/V01

Juillet 2017

Notation M-178 erronée corrigée par M-104

Historique

M-104/V01 Novembre 2017 Correction porosité membrane PVC Prinicpe et informations, Méthode de prélèvement
M-104/V01.01 Juillet 2019 Modification éditoriale sans impact sur le contenu de la méthode  

M-104/V02

Mars 2021

Modification imprégnation des filtres avec ajout de glycérol

Ajout des données de validation pour le trichlorure d'azote sur cassette

Dispositif de prélèvement

Données de validation

M-104/V02

 

Octobre 2021

 

Ajout précision pour l'utilisation de la cassette seule

Ajout du tableau de calcul d'incertitude

Dispositif de prélèvement

Données de validation

 

Date de mise à jour : octobre 2021

Ancien numéro de fiche MétroPol : 007